实验室和临床数据

群体基因组学分析

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群体基因组学分析

本应用案例由学术研究人员与 Drylab 共同创建。完整的对话过程展示了研究人员如何与 Drylab 进行交互以执行分析、提出问题,并随着新见解的涌现而调整工作流程。

我们希望这些示例能为您自己的研究带来新的方法和启示。

摘要

分析全基因组重测序数据,以量化群体间的遗传结构,评估饲养群体与野生群体之间的分化,并鉴定受选择的基因组区域。此工作流程有助于解答以下问题:
(1) 这些群体之间的差异有多大
(2) 哪些基因组位点分化了群体——这些位点即为性状关联标记的候选位点。

输入
  • 全基因组重测序数据(每个样本约 1× 覆盖度)

  • 4 个群体:

    • ISP(工业化饲养群体,肯尼亚)

    • NBI(工业化饲养群体,肯尼亚)

    • UW(野生群体,乌干达西部)

    • UE(野生群体,乌干达东部)

  • 初步鉴定出超过 450 万个 SNP

输出
  • 质量控制与污染检测

  • 群体结构分析 (PCA)

  • 群体混杂分析 (Admixture)

  • 遗传分化度分析 (FST)

  • 选择性扫荡检测 (Selective sweep)

  • 传统硬呼叫 (Hard-call) 方法与基因型似然值 (GL) 方法之间的交叉验证

  • 自动生成最终报告

关键生物学结论

1. 工业化饲养群体正逐渐与野生群体发生分化

饲养群体与野生群体的分化度达到:

  • ISP vs UW: FST = 0.113

  • NBI vs UW: FST = 0.106

2. 发现了一个主要的候选驯化位点

在以下位置检测到了最强的选择信号:

2 号染色体(约 137.35 Mb),其中:

  • FST = 0.801 (ISP vs UW)

  • FST = 0.753 (NBI vs UW)

重要的是,该信号独立出现在两个商业饲养群体中,表明在工业化育种过程中存在共同的适应性响应。

3. 鉴定出其他候选选择区域
  • 次级候选区域:5 号染色体(约 77.9 Mb)

  • 潜在的三级候选区域:3 号染色体(约 173.5 Mb)

这些区域可能包含与生长、饲料转化效率、环境适应性或生产性能等性状相关的基因。

分析细分说明

数据集: PRJNA1256126 子集:20 个全基因组鸟枪法测序样本,每个样本 4-9 M reads,来自四个群体:ISP(肯尼亚,饲养,n=5),NBI(肯尼亚,饲养,n=5),UW(乌干达,野生,n=5),UE(乌干达,野生,n=5)。参考基因组:黑水虻(Black Soldier Fly)染色体水平基因组组装版本 Hermetia illucens GCA_905115235.1(7 条染色体,约 1.01 Gb)。跳过 BQSR(非模式生物),因为在没有已知变异数据库的情况下,对非模式生物进行 BQSR 是不合适的。

  1. 原始数据处理

变异检测 (Variant calling):使用 nf-core/sarek 流程,采用 GATK HaplotypeCaller 联合群体检测模式 (joint-germline mode),区间限制在 7 条常染色体上。分析流程在本地提交运行。

硬过滤 (Hard filtering):确认了标准的 GATK INFO 字段(QD, FS, MQ, MQRankSum, ReadPosRankSum, SOR);并行提取并标记每条染色体上的 SNP,然后进行合并。获得双等位基因 PASS SNP 约 25.6 M。使用 plink2 (v2.0.0-a.7.1) 过滤 MAF > 5% 且 --geno 0.50(最大缺失率 50%,考虑到此下采样概念验证数据集中约 1× 的覆盖度,这是最低可行阈值);最终保留了 1,681,501 个 SNP。

  1. 样本质控

  • 所有 20 个样本均通过了单样本缺失率质控(6-13%,均远低于 30% 的排除阈值)。

  • 各样本的 Ts/Tv 比值在 1.4-2.0 之间。这略低于哺乳动物约 2.1 的预期值,但昆虫基因组本身的 Ts/Tv 比值就原生低于哺乳动物基因组。

  • 5 个样本(全部 UE 样本 + 2 个 UW 样本)的比对率极低(9-26%),而 12/20 的样本比对率 >90%。UE 中极端位点深度的不均匀性(在检出位点上为 20-270×,而其他群体中约为 1-3.5×)反映了少数比对上的 reads 集中在少数可及区域中——这一特征与野外采集的幼虫样本中含有高比例的微生物/环境 DNA 一致。


  1. 基于硬呼叫的群体结构

  • 基于 128,007 个经 LD 剪切的 SNP 进行的主成分分析 (PCA) 将饲养的肯尼亚群体(ISP、NBI)与野生的乌干达群体(UW)分离开来。sNMF 混杂分析(K=2)支持了这一格局,ISP 和 UW 表现出截然不同的祖先成分,而 NBI 则表现出稍高一些的混杂多样性。

  • 两两群体的硬呼叫 FST 估算值表明,ISP 与 NBI 之间的分化度极低(FST = 0.004),而饲养群体与野生群体之间存在中等程度的分化(ISP-UW = 0.084;NBI-UW = 0.066)。

  1. 基于基因型似然值验证的群体结构

  • 基因型似然值 (GL) 分析证实了在硬呼叫分析中观察到的饲养-野生群体结构,同时提供了更高的分辨率。PCAngsd 识别出一个显著的 NBI 离群样本 (SRR34006906),这可能代表了基因混杂、污染或不典型的育种品系。

  • 基于 GL 的混杂分析显示,ISP (99.3%) 和 NBI (92.4%) 具有极强的饲养群体祖先成分,而 UW 个体则主要表现出野生祖先成分。

  • 经 GL 矫正的 FST 估算值显示出比硬呼叫方法高得多的分化度,特别是在 ISP 和 NBI 之间(0.046 对比 0.004),增幅达 11.5 倍。饲养与野生群体之间的分化度也有所提高(ISP-UW = 0.113;NBI-UW = 0.106)。

    比较组合

    硬呼叫 FST (PLINK2)

    基于 GL 的 FST (realSFS)

    变化倍数

    ISP–NBI(饲养–饲养)

    0.004

    0.046


    11.5

    ISP–UW(饲养–野生)

    0.084

    0.113

    1.3

    NBI–UW(饲养–野生)

    0.066

    0.106

    1.6

  1. 选择扫荡扫描

  • 基于硬呼叫的滑窗 FST 扫描在 Chr5(约 77.9 Mb)和 Chr3(约 173.5 Mb)上发现了候选选择扫荡区域。

  • 基于 GL 的分析显示在 Chr2(约 137.35 Mb)上有更强的信号,FST 峰值分别达到 0.801 (ISP-UW) 和 0.753 (NBI-UW)。该区域在两个饲养群体中共有,代表了驯化过程中受选择的最强候选位点。

    • 交叉验证支持 Chr5 作为次级候选区域,而 Chr3 信号降至 GL 显著性阈值以下,应视为暂定候选区域。

    位点

    染色体

    位置

    硬呼叫最大 FST

    GL 最大 FST (ISP–UW)

    GL 最大 FST (NBI–UW)

    GL 验证通过

    Peak A

    Chr2 (LR899010.1)

    ~137.35 Mb

    -

    0.801

    0.753

    是(两者均通过)

    Peak B

    Chr5 (LR899013.1)

    ~77.9 Mb

    首要候选

    0.312

    0.260

    是(>99% 分位数)

    Peak C

    Chr3 (LR899011.1)

    ~173.5 Mb

    首要候选

    0.235

    0.235

    处于边缘


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